Экспериментальная терапия кроликов с лучевым циститом
Том 67 № 1 (2021), ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Б. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Том 67 № 1 (2021)

Экспериментальная терапия кроликов с лучевым циститом

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Б. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
https://doi.org/10.37469/0507-3758-2021-67-1-150-156
Опубликован 03.03.2022
  • Олег Корытов
  • Сергей Иванов
  • Луиза Корытова
  • Александр Семенов
  • Григорий Точильников
  • Ирина Васильева
  • Владимир Беспалов
  • Артур Ахтемзянов
Олег Корытов
Сергей Иванов
Луиза Корытова
Александр Семенов
Григорий Точильников
Ирина Васильева
Владимир Беспалов
Артур Ахтемзянов
pdf

Ключевые слова

мочевой пузырь
лучевой цистит
гель АГДЛ
внутрипузырное введение

Как цитировать

Корытов, О., Иванов, С., Корытова, Л., Семенов, А., Точильников, Г., Васильева, И., Беспалов, В., & Ахтемзянов, А. (2022). Экспериментальная терапия кроликов с лучевым циститом. Вопросы онкологии, 67(1), 150–156. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2021-67-1-150-156
ACM ACS APA ABNT Chicago Harvard IEEE MLA Turabian Vancouver

Аннотация

На новой модели индукции лучевого цистита (ЛЦ) у кроликов оценивали эффективность лечения животных при внутрипузырном введении биодеградируемого лекарственного средства - геля, содержащего соли альгиновой и гиалуроновой кислот, а также диоксидин и лидокаин (АГДЛ). Работа была проведена на самках кроликов породы «Шиншилла». Фракционное облучение мочевого пузыря кроликов осуществляли на линейном ускорителе фотонов: разовая доза за фракцию составляла 6 Гр, которая подводилась ежедневно в течение 5 дней до суммарной очаговой дозы 30 Гр. В результате облучения мочевого пузыря у животных развивался ЛЦ. Гель АГДЛ вводили внутрипузырно с помощью специального катетера в дозе 2500 мг/кг массы тела 3 раза в день еженедельно, начиная с 1 месяца после облучения, в течение 2 месяцев. Препарат оказывал выраженное лечебное действие на кроликов с ЛЦ - снижались величины клинических и лабораторных показателей цистита в моче и крови, происходила регрессия морфологических проявлений воспаления слизистой оболочки мочевого пузыря.

https://doi.org/10.37469/0507-3758-2021-67-1-150-156
pdf

Библиографические ссылки

Коровина М.А., Олтаржевская Н.Д., Миркин Я.Б. и др. Способ лечения лучевого и интерстициального цистита. Пат. на изобретение. 2015; № 2557944 [Korovina M.A., Oltarzhevskaya ND, Mirkin Ya.B., Khlystova T.S. Method for the treatment of radiation and interstitial cystitis. Pat. for invention. 2015; No. 2557944 (In Russ.)].

Корытов О.В. Корытова Л.И., Беспалов В.Г. и др. Способ моделирования лучевого цистита. Пат. на изобретение. 2019; №2676431 [Korytov O.V., Korytova L.I., Bespalov V.G. et al. Method for modeling radiation cystitis. Pat. for invention. 2019;. No. 2676431 (In Russ.)].

Миркин Я.Б., Хлыстова Т.С., Олтаржевская Н.Д. и др. Способ лечения цистита. Пат. на изобретение.2014; № 2537031 [Mirkin Ya.B., Khlystova T.S., Oltarzhevskaya N.D. et al. Method for the treatment of cystitis. Pat. for invention. 2014;№ 2537031 (In Russ.)].

Сычева И.В., Пасов В.В., Курпешева А.К. Консервативные методы лечения местных лучевых повреждений, сформировавшихся в результате сочетанной лучевой терапии и брахитерапии рака предстательной железы. Сиб. онкол. журнал. 2012; 5 (53):57-60 [Sycheva I.V., Pasov V.V., Kurpesheva А.К. Conservative treatment of local radiation-induced injuries caused by combined brachitherapy and external radiation therapy for prostate cancer. Sibirian Oncol. J. 2012.5(53): 57-60 (In Russ.)].

Alesawi A.M., El-Hakim A., Zorn K.C., Saad F. Radiation-induced hemorrhagic cystitis. Curr. Opin. Support. Palliat Care. 2014; 8: 235240. doi: 10.1097 / SPC.0000000000000073.

Browne C., Davis N. F., Mac Craith E. et al. A narrative review on the pathophysiology and management for radiation cystitis. Adv. Urology. 2015; 2015: Article ID 346812. doi: 10.1155 / 2015/346812.

Delgado J.M., Samper P., Garrido J. Hyaluronic acid in the prevention of radiation-induced cystitis (Abstr.) Proc Am Soc Clin Oncol. 2003;22:752.

Denton A.S., Clarke N.W., Maher E.J. Non-surgical interventions for late radiation cystitis in patients who have received radical radiotherapy to the pelvis. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2002; 3: Article ID CD001773. doi: 10.1002 / 14651858.CD001773.

Gacci M., Saleh O., Giannessi C. et al. Bladder instillation therapy with hyaluronic acid and chondroitin sulfate improves symptoms of postradiation cystitis: Prospective pilot study. Clin Genitourin. Cancer. 2016; 14(5): 444-449. doi: 10.1016 / j.clgc.2016.01.016.

Jaal J., Dorr W. Radiation induced late damage to the barrier function of small blood vessels in mouse bladder. J. Urol. 2006; 176(6): 2696-2700. doi: 10.1016 / j.juro.2006.07.138.

Kohler M., Michael C., Zimmermann A. Histological changes after fractionated whole or partial irradiation of the rabbit urinary bladder. Acta Oncol. (Madr). 1995; 24: 199-204.

Lazzeri M. New horizons for GAG therapy in the management of urothelial damage. Urologia. 2015; 82(Suppl. 3):10-14. doi: 10.5301 / uro.5000146.

Mallick S., Madan R., Julka P.K. et al. Radiation induced cystitis and proctitis - prediction, assessment and management. Asian Pac. J. Cancer Prev. 2015; 16(140: 5589-5594. doi:10.7314 / apjcp.2015.16.14.5589.

Muhlstadt S., Mohammed N., Weigand K. et al. Radiogen bedingte Zystitis. Pathophysiologie und Therapie. Urologe A. 2017; 56: 301-305.

Pavlidakey P.G., MacLennan G.T. Radiation cystitis. J. Urol. 2009:182(3): 1172–1173. doi: 10.1016/j.juro.2009.06.034.

Rajagapathy B.R., Janicki J.J., Levanovich P. et al. Intravesical liposomal tacrolimus protects against radiation cystitis induced by 3-beam targeted bladder radiation. J. Urol. 2015; 194(2): 578-584. doi: 10.1016/j.juro.2015.03.108.

Rapariz-Gonzalez M., Castro-Diaz D., Mejia-Rendon D. Evaluation of the impact of urinary symptoms on quality of life of patients with painful bladder syndrome/chronic pelvic pain and radiation cystitis: EURCIS study. Acta Urologicas Espanolas. 2014; 38(4):224-231. doi: 10.1016/j.acuro.2013.09.016.

Samper O.P.M., Lopez C.C., Rodriguez A. et al. Vesical instillations of hyaluronic acid to reduce the acute vesical toxicity caused by high-dose brachytherapy do not affect the survival: a five-year follow-up study. Clin Transl Oncol. 2009;11(12): 828-834. doi: 10.1007 /s12094-009-0451-6.

Shao Y., Lu G.L., Shen Z.J. et al. Comparison of intravesical hyaluronic acid instillation and hyperbaric oxygen in the treatment of radiation-induced hemorrhagic cystitis.BJU Int. 2012; 109(5): 691-694. doi: 10.1111 / j.1464-410X.2011.10550x.

Sommariva M.L., Sandri S.D., Geriani V. Efficacy of sodium hyaluronate in the management of chemical and radiation cystitis. Minerva Urol. Nefrol. 2010; 62(2): 145-150.

Zwaans B.M., Chancellor M.D., Lamb I.E. Modeling and treatment of radiation cystitis. Urology. 2016;.88(1): 14-21. doi:10.1016/ j.urology.2015.11.001.

Zwaans B.M.M., Krueger S., Bartolone S.N. et al. Modeling of radiation-induced cystitis in mice. Adv. Radiat. Oncology. 2016; 1(4): 333-343. doi: 10.1016 / j.adro.2016.07.004.

Лицензия Creative Commons

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.

© АННМО «Вопросы онкологии», Copyright (c) 2021

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)

1 2 3 > >>