Ассоциация наследственных вариантов генов иммунного ответа с возрастом манифестации brca1-обусловленного рака молочной железы
Загрузок: 14
Загрузок: 3
Просмотров: 76
pdf
pdf suppl

Ключевые слова

рак молочной железы
BRCA1
наследственные мутации
возраст манифестации
противоопухолевый иммунитет
PRF1
пенетрантность

Как цитировать

Мартьянов, А. С., Кулигина, Е. Ш., Романько, А. А., Янус, Г. А., Тумакова, А. В., Сёмина, М. В., Попова, А. П., Суспицин, Е. Н., & Имянитов, Е. Н. (2026). Ассоциация наследственных вариантов генов иммунного ответа с возрастом манифестации brca1-обусловленного рака молочной железы. Вопросы онкологии, 72(2), OF–2541. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2026-72-2-OF-2541

Аннотация

Введение. Наследственные дефекты BRCA1/2 — наиболее частая причина наследственного рака молочной железы (РМЖ), однако не все носительницы мутаций в этих генах заболевают раком в течение жизни. Для BRCA1-ассоциированных опухолей характерна хромосомная нестабильность и, как следствие, повышенная антигенная нагрузка, что делает эти неоплазмы достаточно иммуногенными. Мы предположили, что наследственные особенности иммунной системы могут модифицировать риск развития РМЖ у носительниц мутаций BRCA1, способствуя или отдаляя дебют заболевания.

Цель. Поиск наследственных вариантов генов иммунного ответа, влияющих на возраст манифестации BRCA1-ассоциированного РМЖ.

Материалы и методы. Поиск наследственных риск-модифицирующих вариантов производился посредством таргетного секвенирования 353 генов иммунного ответа у 42 пациенток с ранним (< 39 лет) и 35 с поздним (> 57 лет) началом BRCA1-ассоциированного РМЖ. Молекулярно-эпидемиологическая валидация кандидатных вариантов проводилась на «пилотной» выборке (90 «ранних» и 90 «поздних» случаев) с помощью HRM-ПЦР (high-resolution melting) и секвенирования по Сэнгеру. Анализ мутации PRF1 p.Ala91Val в когортах раннего (n = 164) и позднего (n = 218) начала производился с помощью аллель-специфической ПЦР.

Результаты. По результатам таргетного секвенирования было выявлено 22 потенциально значимых варианта, предположительно ассоциированных с необычно ранним или поздним дебютом РМЖ. Кандидатные мутации затем были проанализированы в расширенных когортах. Вариант PRF1 p.Ala91Val обнаружен у 9,6 % пациентов с ранним началом, в группе пациентов старшего возраста этот аллель не встречался (7/73 против 0/78, p = 0,005). Значимость данной мутации была подтверждена в дополнительной группе российских больных молодого и зрелого возраста (5/50 против 2/117, p = 0,026). Данная тенденция сохранилась и при объединенном анализе российских и польских пациентов (15/164 против 9/218, p = 0,055).

Выводы. Варианты генов иммунного ответа, такие как PRF1 p.Ala91Val, могут влиять на возраст-зависимую пенетрантность мутаций BRCA1. Экзомный скрининг онкологически здоровых и больных носительниц патогенных вариантов BRCA1/2, а также больных BRCA1/2-ассоциированным РМЖ, с ранним и поздним дебютом заболевания может способствовать выявлению новых генетических модификаторов риска РМЖ.

https://doi.org/10.37469/0507-3758-2026-72-2-OF-2541
Загрузок: 14
Загрузок: 3
Просмотров: 76
pdf
pdf suppl

Библиографические ссылки

Huang K.L., Mashl R.J., Wu Y., et al. Pathogenic germline variants in 10,389 adult cancers. Cell. 2018; 173(2): 355-370.e14.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.cell.2018.03.039.

Chen S., Parmigiani G. Meta-analysis of BRCA1 and BRCA2 penetrance. J Clin Oncol. 2007; 25(11): 1329-1333.-DOI: https://doi.org/10.1200/JCO.2006.09.1066.

Chenevix-Trench G., Milne R.L., Antoniou A.C., et al. An international initiative to identify genetic modifiers of cancer risk in BRCA1 and BRCA2 mutation carriers: the Consortium of Investigators of Modifiers of BRCA1 and BRCA2 (CIMBA). Breast Cancer Res. 2007; 9(2): 104.-DOI: https://doi.org/10.1186/bcr1670.

Mavaddat N., Ficorella L., Carver T., et al. Incorporating alternative polygenic risk scores into the BOADICEA breast cancer risk prediction model. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2023; 32(3): 422-427.-DOI: https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-22-0756. Erratum in: Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2025; 34(1): 205.-DOI: https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-24-1661.

Chao B.N., Carrick D.M., Filipski K.K., Nelson S.A. Overview of research on germline genetic variation in immune genes and cancer outcomes. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2022; 31(3): 495-506.-DOI: https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-21-0583.

Lee E.C.Y., Kok J.S.T., Teh B.T., Lim K.S. Interplay between the DNA damage response and immunotherapy response in cancer. Int J Mol Sci. 2022; 23(21): 13356.-DOI: https://doi.org/10.3390/ijms232113356.

Wu B., Qi L., Chiang H.C., et al. BRCA1 deficiency in mature CD8+ T lymphocytes impairs antitumor immunity. J Immunother Cancer. 2023; 11(2): e005852.-DOI: https://doi.org/10.1136/jitc-2022-005852.

Sokolenko A.P., Bakaeva E.K., Venina A.R., et al. Ethnicity-specific BRCA1, BRCA2, PALB2, and ATM pathogenic alleles in breast and ovarian cancer patients from the North Caucasus. Breast Cancer Res Treat. 2024; 203(2): 307-315. -DOI: https://doi.org/10.1007/s10549-023-07135-3.

Wang S.M. A global perspective on the ethnic-specific BRCA variation and its implication in clinical application. J Natl Cancer Cent. 2022; 3(1): 14-20.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.jncc.2022.12.001.

Kuchenbaecker K.B., Hopper J.L., Barnes D.R., et al. Risks of breast, ovarian, and contralateral breast cancer for BRCA1 and BRCA2 mutation carriers. JAMA. 2017; 317(23): 2402-2416.-DOI: https://doi.org/10.1001/jama.2017.7112.

Kuligina E.S., Romanko A.A., Jankevic T., et al. HLA gene polymorphism is a modifier of age-related breast cancer penetrance in carriers of BRCA1 pathogenic alleles. Breast Cancer Res Treat. 2025; 209(2): 341-354.-DOI: https://doi.org/10.1007/s10549-024-07497-2.

Bousfiha A., Jeddane L., Picard C., et al. Human inborn errors of immunity: 2019 Update of the IUIS phenotypical classification. J Clin Immunol. 2020; 40(1): 66-81.-DOI: https://doi.org/10.1007/s10875-020-00758-x.

Suspitsin E.N., Guseva M.N., Kostik M.M., et al. Next generation sequencing analysis of consecutive Russian patients with clinical suspicion of inborn errors of immunity. Clin Genet. 2020; 98(3): 231-239.-DOI: https://doi.org/10.1111/cge.13789.

Cingolani P., Platts A., Wang le L., et al. A program for annotating and predicting the effects of single nucleotide polymorphisms, SnpEff: SNPs in the genome of Drosophila melanogaster strain w1118; iso-2; iso-3. Fly (Austin). 2012; 6(2): 80-92.-DOI: https://doi.org/10.4161/fly.19695.

Richardson M.E., Bishop M.F.H., Holdren M.A., et al. Specifications of the ACMG/AMP variant curation guidelines for the analysis of germline PALB2 sequence variants. Am J Hum Genet. 2025; 112(10): 2266-2280.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2025.08.020.

Gudmundsson S., Singer-Berk M., Watts N.A., et al. Variant interpretation using population databases: Lessons from gnomAD. Hum Mutat. 2022; 43(8): 1012-1030.-DOI: https://doi.org/10.1002/humu.24309.

Voskoboinik I., Whisstock J.C., Trapani J.A. Perforin and granzymes: function, dysfunction and human pathology. Nat Rev Immunol. 2015; 15(6): 388-400.-DOI: https://doi.org/10.1038/nri3839.

Voskoboinik I., Sutton V.R., Ciccone A., et al. Perforin activity and immune homeostasis: the common A91V polymorphism in perforin results in both presynaptic and postsynaptic defects in function. Blood. 2007; 110(4): 1184-1190.-DOI: https://doi.org/10.1182/blood-2007-02-072850.

House I.G., Thia K., Brennan A.J., et al. Heterozygosity for the common perforin mutation, p.A91V, impairs the cytotoxicity of primary natural killer cells from healthy individuals. Immunol Cell Biol. 2015; 93(6): 575-580.-DOI: https://doi.org/10.1038/icb.2015.1.

Sidore C., Orrù V., Cocco E., et al. PRF1 mutation alters immune system activation, inflammation, and risk of autoimmunity. Mult Scler. 2021; 27(9): 1332-1340.-DOI: https://doi.org/10.1177/1352458520963937.

Brennan A.J., Chia J., Trapani J.A., Voskoboinik I. Perforin deficiency and susceptibility to cancer. Cell Death Differ. 2010; 17(4): 607-615.-DOI: https://doi.org/10.1038/cdd.2009.212.

Clementi R., Locatelli F., Dupré L., et al. A proportion of patients with lymphoma may harbor mutations of the perforin gene. Blood. 2005; 105(11): 4424-4428.-DOI: https://doi.org/10.1182/blood-2004-04-1477.

Chaudhry M.S., Gilmour K.C., House I.G., et al. Missense mutations in the perforin (PRF1) gene as a cause of hereditary cancer predisposition. Oncoimmunology. 2016; 5(7): e1179415.-DOI: https://doi.org/10.1080/2162402X.2016.1179415.

Ho W.K., Hassan N.T., Yoon S.Y., et al. Age-specific breast and ovarian cancer risks associated with germline BRCA1 or BRCA2 pathogenic variants — an Asian study of 572 families. Lancet Reg Health West Pac. 2024; 44: 101017.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.lanwpc.2024.101017.

Sokolenko A.P., Bogdanova N., Kluzniak W., et al. Double heterozygotes among breast cancer patients analyzed for BRCA1, CHEK2, ATM, NBN/NBS1, and BLM germ-line mutations. Breast Cancer Res Treat. 2014; 145(2): 553-562.-DOI: https://doi.org/10.1007/s10549-014-2971-1.

Лицензия Creative Commons

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.

© АННМО «Вопросы онкологии», Copyright (c) 2026