РАЗНООБРАЗИЕ ОПУХОЛЕВЫХ МОДЕЛЕЙ ДЛЯ ТЕСТИРОВАНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВОЙ АКТИВНОСТИ ВЕЩЕСТВ У МЫШЕЙ
PDF

Ключевые слова

ОБЗОР
ОПУХОЛЬ
МЫШИ
ПРОТИВООПУХОЛЕВЫЕ ПРЕПАРАТЫ
ПРЕИМУЩЕСТВА
НЕДОСТАТКИ

Аннотация

Подбор переносимых и токсических доз, схем терапии для новых противоопухолевых препаратов, оценка их токсичности, метаболизма фармакокинетики, изучение механизма действия и опухолевой чувствительности с учетом влияния микроокружения и профиля генной экспрессии осуществляются с применением моделей опухолей человека на мышах. Обзор содержит разностороннее описание экспериментальных моделей (перевиваемая, генно-инженерная, гуманизированная, автохтонная, ортотопическая, гетеротопическая и метастатическая) опухолей с применением лабораторных мышей. На примерах научных исследований последних лет рассмотрены преимущества, недостатки, направления и особенности применения мышиных моделей, их роль в исследовании механизмов действия противоопухолевых препаратов.

https://doi.org/10.37469/0507-3758-2020-66-4-353-363
PDF

Библиографические ссылки

Szadvari I., Krizanova O., Babula P. Athymic nude mice as an experimental model for cancer treatment // Physiol. Res. - 2016. - Vol. 65 (Suppl. 4). - P S441-S453.

Bousquet G., Janin A. Patient-derived xenograft: an adjuvant technology for the treatment of metastatic disease // Pathobiology. - 2016. - Vol. 83. - № 4. - P. 170-176.

Evans J P., Suttona P.A., Winiarski B.K. et al. From mice to men: Murine models of colorectal cancer for use in translational research // Crit. Rev. Oncol. Hematol. -2016. - Vol. 98. - P. 94-105.

Холоденко И.В., Доронин И.И., Холоденко Р.В. Опухолевые модели в изучении онкологических заболеваний // Иммунология. - 2013. - № 5. - C. 282-286.

Hardee S., Prasad M.L., Hui P et al. Pathologic characteristics, natural history, and prognostic implications of BRAFV600E mutationin pediatric papillary thyroid carcinoma // Pediatr. Dev. Pathol. - 2017. - Vol. 20. - № 3. - P. 206-212.

Kellar A., Egan C., Morris D. Preclinical Murine Models for Lung Cancer: Clinical Trial Applications // BioMed Res. Intern. - Vol. 2015. - Article ID 621324.

Talmadge J.E., Singh R.K., Fidler I.J., Raz A. Murine models to evaluate novel and conventional therapeutic strategies for cancer // Am. J. Pathol. - 2007. - Vol. 70. - № 3. - P. 793-804.

Gargiulo G. Next-Generation in vivo Modeling of Human Cancer // Front. Oncol. - 2018. - Vol. 8. - P. 429.

Berger M. Is there a relevance for anticancer drug development. Relevance of tumor models for anticancer drug development. - In: Fiebig HH, Burger BA., eds. Contributions to oncology. Basel: Karger, 1999. - P 15-27.

Гудратов Н.О. К 95-летию выведения первых линейных мышей. Линейные мыши: достоинства и недостатки // Биомедицина. - 2004. - № 4. - С. 40-42.

Линейные животные биомодели. www.scbmt.ru β mag β osn-bio › section_iii

Wainwright D.A., Horbinski C.M., Hashizume R. et al. Therapeutic hypothesis testing with rodent brain tumor models // Neurotherapeutics. - 2017. - Vol. 14. - № 2. - P. 385-392.

Falcone L., Casucci M. Exploiting secreted luciferases to monitor tumor progression in vivo // Methods Mol Biol. - 2016. - Vol. 1393. - P. 105-111.

Kurmasheva R.T., Houghton P.J. Identifying novel therapeutic agents using xenograft models of pediatric cancer // Cancer Chemother. Pharmacol. - 2016. - Vol. 78. - № 2. - P. 221-232.

Dutt A., Wong K-K. Mouse Models of Lung Cancer // Clin. Cancer Res. - 2006. - Vol. 12. - P. 4396s-4402s.

Day C-P., Merlino G., Van Dyke T. Preclinical Mouse Cancer Models: A Maze of Opportunities and Challenges // Cell. - 2015. - Vol. 163. - № 1. - P. 39-53.

Стуков А.Н., Вершинина С.Ф., Козявин Н.А. и др. Изучение активности ломустина при перевиваемом HER2-положительном раке молочной железы у мышей линии FVB/N, трансгенных по HER2 // Сибирский онкологический журнал. - 2019. - Т. 18. - № 5. - С. 54-60.

Wang Q.F., Ding H., Liu B.R. et al. Generation and comparison of two genetically engineered mouse models of ErbB2/Neu positive-PTEN deficient breast cancer // Zhejiang Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. - 2014. - Vol. 43. - № 4. - P. 427-433.

Gantz J.A., Palpant N.J., Welikson R.E. et al. Targeted genomic integration of a selectable floxed dual fluorescence reporter in human embryonic stem cells // PLoS One. - 2012. - Vol. 7. - № 10. - e46971.

Kemp CJ. Animal models of chemical carcinogenesis: driving breakthroughs in cancer research for 100 years // Cold Spring Harb. Protoc. - 2015. - Vol. 2015. - № 10. - P. 865-874.

IARC Monographs on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans. Vol. 97 (1,3-Butadiene, Ethylene Oxide and Vinyl Halides (Vinyl Fluoride, Vinyl Chloride and Vinyl Bromide) /IARC Working Group on the Evaluation of Carcinogenic Risks to Humans, 2007: Lyon, France. - 525 p.

Kasala E.R., Bodduluru L.N., Barua C.C. et al. Benzo(a) pyrene induced lung cancer: Role of dietary phytochemicals in chemoprevention // Pharmacol. Rep. - 2015. -Vol. 67. - № 5. - P. 996-1009.

Saito R., Kobayashi T, Kashima S. et al. Faithful preclini-cal mouse models for better translation to bedside in the field of immuno-oncology // Intern. J. Clin. Oncol. - 2019. Aug 12.

Moro M., Bertolini G., Caserini R. et al. Establishment of patient derived xenografts as functional testing of lung cancer aggressiveness // Sci. Rep. - 2017. - Vol. 7. -№ 1. - P. 6689.

Xia C., Chen R., Chen J. et al. Combining metformin and nelfinavir exhibits synergistic effects against the growth of human cervical cancer cells and xenograft in nude mice // Sci. Rep. - 2017. - Vol. 7. - P. 43373.

Lau V., Wong A Li-A., Ng C. et al. Drug sensitivity testing platforms for gastric cancer diagnostics // J. Clin. Pathol. - 2016. - Vol. 69. - № 2. - P. 93-96.

Cao X., Shores E.W., Hu-Li J. et al. Defective lymphoid development in mice lacking expression of the common cytokine receptor gamma chain // Immunity. - 1995. -Vol. 2. - № 3. - P. 223-238.

Shultz L.D., Lyons B.L., Burzenski L.M. et al. Human lymphoid and myeloid cell development in NOD/LtSz-scid IL2R gamma null mice engrafted with mobilized human hemopoietic stem cells // J. Immunol. -2005. - Vol. 174. - № 10. - P. 6477-6489.

Blunt T, Finnie N.J., Taccioli G.E. et al. Defective DNA-dependent protein kinase activity is linked to V(D)J recombination and DNA repair defects associated with the murine scid mutation // Cell. - 1995. - Vol. 80. - № 5. - P. 813-823.

Takenaka K., Prasolava T.K., Wang J.C. et al. (). Polymorphism in Sirpa modulates engraftment of human hematopoietic stem cells // Nat. Immunol. - 2007. - Vol. 8. - № 12. - P. 1313-1323.

Joo S.Y, Choi B.K., Kang M.J. et al. Development of functional human immune system with the transplantations of human fetal liver/thymus tissues and expanded hematopoietic stem cells in RAG2-/-gamma(c)-/-mice // Transplant. Proc. -2009. - Vol. 41. - № 5. - P. 1885-1890.

Douglas D.N., Kneteman N.M. Generation of improved mouse models for the study of hepatitis C virus // Eur. J. Pharmacol. - 2015. - Vol. 759. - P. 313-325.

Barzi M., Pankowicz F. P., Zorman B. et al. A novel humanized mouse lacking murine P450 oxidoreductase for studying human drug metabolism // Nat. Commun. - 2017. - Vol. 8. - № 1. - P. 39.

Bournazos S., DiLillo D.J., Ravetch J.V. Humanized mice to study FcR function // Curr. Top. Microbiol. Immunol. - 2014. - Vol. 382. - P. 237-248.

Morin A., Ruggiero C., Robidel E. et al. Establishment of a mouse xenograft model of metastatic adrenocortical carcinoma // Oncotarget. - 2017. - Vol. 8. - № 31. - P. 51050-51057.

Okada S., Vaeteewoottacharn K., Kariya R. Establishment of a patient-derived tumor xenograft model and application for precision cancer medicine // Chem. Pharm. Bull. (Tokyo). - 2018. - Vol. 66. - № 3. - P. 225-230.

Лицензия Creative Commons

Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.

Copyright (c) 2020 Татьяна Нехаева, А. Чернов, Яна Торопова, Михаил Галагудза, Ирина Балдуева