Механизмы формирования специфического противоопухолевого иммунитета и резистентности к ингибиторам контрольных точек иммунного ответа
pdf (Русский)

关键词

противоопухолевый иммунитет
ингибиторы контрольных точек
Т-клеточный рецептор
V(D)J-рекомбинация ДНК
TREC
KREC

How to Cite

Султанбаев, А. В., Тузанкина, И. А., Насретдинов, А. Ф., Султанбаева, Н. И., Мусин, Ш. И., Меньшиков, К. В., Султанбаев, М. В., Сатышев, О. В., Измайлов, А. А., Кудлай, Д. А., & Имянитов, Е. Н. (2024). Механизмы формирования специфического противоопухолевого иммунитета и резистентности к ингибиторам контрольных точек иммунного ответа. VOPROSY ONKOLOGII, 70(3), 433–439. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2024-70-3-433-439

摘要

Данный обзор посвящен механизмам работы противоопухолевого иммунитета и особенностям его формирования. Ингибиторы контрольных точек иммунного ответа изменили парадигму лечения больных со злокачественными новообразованиями (ЗНО). Иммунотерапия при многих ЗНО показала превосходящую стандартные химиотерапевтические опции эффективность. В данной работе представлен обзор литературных данных о механизмах формирования специфического противоопухолевого иммунитета и резистентности ЗНО к препаратам контроля иммунных точек. Для определения эффективности применения ингибиторов контрольных точек в клинической практике широко распространены маркеры: PD-L1 статус и микросателлитная нестабильность. Результаты исследований показывают, что уровень экспрессии PD-L1 определяет эффективность иммунотерапии. Наличие высокой микросателлитной нестабильности определяет чувствительность к терапии ИКТ независимо от гистологического подтипа. Наличие статусов PD-L1 и MSI является показанием для назначения блокаторов PD1 и PD-L1. Даже при наличии MSI и высокой экспрессии PD-L1 у определенной группы пациентов отсутствует эффект от проводимой терапии, что указывает о резистентности и отсутствии специфического противоопухолевого иммунитета. V(D)J-рекомбинации ДНК обеспечивают продукцию разнообразных антигенных рецепторов в развивающихся Т- и В-лимфоцитах, что представляется ключевым фактором развития специфического противоопухолевого иммунитета. Для определения эффективности иммунотерапии следует рассмотреть количественные показатели TREC и KREC.

https://doi.org/10.37469/0507-3758-2024-70-3-433-439
pdf (Русский)

参考

Amodio V., Mauri G., Reilly N.M., et al. Mechanisms of immune escape and resistance to checkpoint inhibitor therapies in mismatch repair deficient metastatic colorectal cancers. Сancers. 2021; 13(11): 2638.-DOI: https://doi.org/10.3390/cancers13112638.

Schmid P., Rugo H.S., Adams S., et al. Atezolizumab plus nab-paclitaxel as first-line treatment for unresectable, locally advanced or metastatic triple-negative breast cancer (IMpassion130): updated efficacy results from a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trial. Lancet Oncol. 2020; 21(1): 44-59.-DOI: https://doi.org/10.1016/S1470-2045(19)30689-8.

Michielin O., van Akkooi A., Ascierto P., et al. Cutaneous melanoma: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up†. Ann Oncol. 2019; 30(12).-DOI: https://doi.org/10.1093/annonc/mdz411.

Planchard D., Popat S., Kerr K., et al. Correction to: «Metastatic non-small cell lung cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up.». Ann Oncol. 2019; 30(5): 863-70.-DOI: https://doi.org/10.1093/annonc/mdy474.

Chung H.C., Ros W., Delord J.P., et al. Efficacy and safety of pembrolizumab in previously treated advanced cervical cancer: results from the phase II KEYNOTE-158 study. J Clin Oncol. 2019; 37(17): 1470-8.-DOI: https://doi.org/10.1200/JCO.18.01265.

Stratigos A.J., Sekulic A., Peris K., et al. Cemiplimab in locally advanced basal cell carcinoma after hedgehog inhibitor therapy: an open-label, multi-centre, single-arm, phase 2 trial. Lancet Oncol. 2021; 22(6): 848-57.-DOI: https://doi.org/10.1016/S1470-2045(21)00126-1.

Saada-Bouzid E., Peyrade F., Guigay J. Immunotherapy in recurrent and or metastatic squamous cell carcinoma of the head and neck. Current Opinion in Oncology. 2019; 31(3): 146-51.-DOI: https://doi.org/10.1097/CCO.0000000000000522.

Herbst R.S., Arkenau H.T., Santana-Davila R., et al. Ramucirumab plus pembrolizumab in patients with previously treated advanced non-small-cell lung cancer, gastro-oesophageal cancer, or urothelial carcinomas (JVDF): a multicohort, non-randomised, open-label, phase 1a/b trial. Lancet Oncol. 2019; 20(8): 1109-23.-DOI: https://doi.org/10.1016/S1470-2045(19)30458-9.

Robert C., Long G.V., Brady B., et al. Nivolumab in previously untreated melanoma without BRAF mutation. N Engl J Med. 2015; 372(4): 320-30.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1412082.

Hodi F.S., O’Day S.J., McDermott D.F., et al. Improved survival with ipilimumab in patients with metastatic melanoma. N Engl J Med. 2010; 363(8): 711-23.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1003466.

van Dijk N., Gil-Jimenez A., Silina K., et al. Preoperative ipilimumab plus nivolumab in locoregionally advanced urothelial cancer: the NABUCCO trial. Nature Medicine. 2020; 26(12): 1839-44.-DOI: https://doi.org/10.1038/s41591-020-1085-z.

Robert C., Schachter J., Long G.V., et al. Pembrolizumab versus ipilimumab in advanced melanoma. N Engl J Med. 2015; 372(26): 2521-32.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1503093.

Wolchok J.D., Chiarion-Sileni V., Gonzalez R., et al. Overall survival with combined nivolumab and ipilimumab in advanced melanoma. N Engl J Med. 2017; 377(14): 1345-56.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1709684.

Weber J., Mandala M., Del Vecchio M., et al. Adjuvant nivolumab versus ipilimumab in resected stage III or IV melanoma. N Engl J Med. 2017; 377(19): 1824-35.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1709030.

Eggermont A.M.M., Blank C.U., Mandala M., et al. Adjuvant pembrolizumab versus placebo in resected stage III melanoma. N Engl J Med. 2018; 378(19): 1789-801.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1802357.

Tjulandin S., Demidov L., Moiseyenko V., et al. Novel PD-1 inhibitor prolgolimab: expanding non-resectable/metastatic melanoma therapy choice. European Journal of Cancer (Oxford, England: 1990). 2021; 149: 222-32.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.ejca.2021.02.030.

Torre L.A., Siegel R.L., Jemal A. Lung cancer statistics. Adv Exp Med Biol. 2015; 1-19.-DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-24223-1_1.

Lahiri A., Maji A., Potdar P.D., et al. Lung cancer immunotherapy: progress, pitfalls, and promises. Molecular Cancer. 2023; 22(1).-DOI: https://doi.org/10.1186/s12943-023-01740-y.

Taube J.M., Klein A., Brahmer J.R., et al. Association of PD-1, PD-1 ligands, and other features of the tumor immune microenvironment with response to anti-PD-1 therapy. Clin Cancer Res. 2014; 20(19): 5064-74.-DOI: https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-13-3271.

Ott P.A., Bang Y.J., Piha-Paul S.A., et al. T-cell–inflamed gene-expression profile, programmed death ligand 1 expression, and tumor mutational burden predict efficacy in patients treated with pembrolizumab across 20 cancers: KEYNOTE-028. J Clin Oncol. 2019; 37(4): 318-27.- DOI: https://doi.org/10.1200/JCO.2018.78.2276

Gao C., Li X., Ji Y., et al. CTLA-4 regulates T follicular regulatory cell differentiation and participates in intestinal damage caused by spontaneous autoimmunity. Biochem Biophys Res Commun. 2018; 505(3): 865-71.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2018.09.182.

Zhao P., Li L., Jiang X., Li Q. Mismatch repair deficiency/microsatellite instability-high as a predictor for anti-PD-1/PD-L1 immunotherapy efficacy. Journal of Hematology & Oncology. 2019; 12(1).-DOI: https://doi.org/10.1186/s13045-019-0738-1.

Le D.T., Uram J.N., Wang H., et al. PD-1 blockade in tumors with mismatch-repair deficiency. N Engl J Med. 2015; 372(26): 2509-20.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1500596.

Marcus L., Lemery S.J., Keegan P., Pazdur R. FDA approval summary: pembrolizumab for the treatment of microsatellite instability-high solid tumors. Clin Cancer Res. 2019; 25(13): 3753-8.-DOI: https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-18-4070.

Taube J.M., Klein A., Brahmer J.R., et al. Association of PD-1, PD-1 ligands, and other features of the tumor immune microenvironment with response to Anti-PD-1 therapy. Clin Cancer Res. 2014; 20(19): 5064-74.-DOI: https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-13-3271.

Cristescu R., Mogg R., Ayers M., et al. Pan-tumor genomic biomarkers for PD-1 checkpoint blockade–based immunotherapy. Science. 2018; 362(6411): eaar3593.-DOI: https://doi.org/10.1126/science.aax1384.

Bagchi S., Yuan R., Engleman E.G. Immune checkpoint inhibitors for the treatment of cancer: clinical impact and mechanisms of response and resistance. Annu Rev Pathol. 2021; 16(1): 223-49.-DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-pathol-042020-042741.

Morad G., Helmink B.A., Sharma P., Wargo J.A. Hallmarks of response, resistance, and toxicity to immune checkpoint blockade. Cell. 2021; 184(21): 5309-37.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.cell.2021.09.020.

Seto T., Sam D., Pan M. Mechanisms of primary and secondary resistance to immune checkpoint inhibitors in cancer. Medical Sciences. 2019; 7(2): 14.-DOI: https://doi.org/10.3390/medsci7020014.

Султанбаев А.В., Мусин Ш.И., Меньшиков К.В., et al. Роль хромосомных V(D)J рекомбинаций лимфоцитов в формировании противоопухолевого иммунитета и эффективности применения иммунотерапии. Молекулярная медицина. 2023; 21(4): 11-19.-DOI: https://doi.org/10.29296/24999490-2023-04-02. [Sultanbaev A.V., Musin Sh.I., Menshikov K.V., et al. The role of chromosomal V(D)J recombinations of lymphocytes in the formation of antitumor immunity and the effectiveness of immunotherapy. Molecular Medicine. 2023; 21(4): 11-19.-DOI: https://doi.org/10.29296/24999490-2023-04-02. (In Rus)].

Serana F., Chiarini M., Zanotti C., et al. Use of V(D)J recombination excision circles to identify T- and B-cell defects and to monitor the treatment in primary and acquired immunodeficiencies. J Transl Med. 2013; 11(1): 119.-DOI: https://doi.org/10.1186/1479-5876-11-119.

Toubert A., Glauzy S., Douay C., Clave E. Thymus and immune reconstitution after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in humans: never say never again. Tissue Antigens. 2012; 79(2): 83-9.-DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-0039.2011.01820.x.

Velardi E., Clave E., Arruda L.C.M., et al. The role of the thymus in allogeneic bone marrow transplantation and the recovery of the peripheral T-cell compartment. Seminars in Immunopathology. 2021; 43(1): 101-17.-DOI: https://doi.org/10.1007/s00281-020-00828-7.

Mensen A., Ochs C., Stroux A., et al. Utilization of TREC and KREC quantification for the monitoring of early T- and B-cell neogenesis in adult patients after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. J Transl Med. 2013; 11(1).-DOI: https://doi.org/10.1186/1479-5876-11-188.

Negative selection of lymphocytes. Cell. 1994; 76(2): 229-39.-DOI: https://doi.org/10.1016/0092-8674(94)90331-x.

Fry A.M., Jones L.A., Kruisbeek A.M., Matis L.A. Thymic requirement for clonal deletion during T cell development. Science (New York, NY). 1989; 246(4933): 1044-6.-DOI: https://doi.org/10.1126/science.2511630.

Hodes R.J., Sharrow S.O., Solomon A. Failure of T cell receptor V beta negative selection in an athymic environment. Science (New York, NY). 1989; 246(4933): 1041-4.-DOI: https://doi.org/10.1126/science.2587987.

Ghia P., ten Boekel E., Rolink A.G., Melchers F. B-cell development: a comparison between mouse and man. Immunol Today. 1998; 19(10): 480-5.-DOI: https://doi.org/10.1016/s0167-5699(98)01330-9.

Dik W.A., Pike-Overzet K., Floor Weerkamp, et al. New insights on human T cell development by quantitative T cell receptor gene rearrangement studies and gene expression profiling. J Exp Med. 2005; 201(11): 1715-23.-DOI: https://doi.org/10.1084/jem.20042524.

Kwok J.S.Y., Cheung S.K.F., Ho J.C.Y., et al. Establishing Simultaneous T cell receptor excision circles (TREC) and K-deleting recombination excision circles (KREC) quantification assays and laboratory reference intervals in healthy individuals of different age groups in Hong Kong. Frontiers in Immunology. 2020; 11.-DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.01411.

Образцов И.В., Гордукова М.А., Цветкова Е.В., et al. Эксцизионные кольца V(D)J рекомбинации B- и T-клеток как показатели иммунологической реконституции у детей с острым лимфобластным лейкозом. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2016; 15(4): 42-50.-DOI: https://doi.org/10.24287/1726-1708-2016-15-4-42-50. [Obraztsov I.V., Gordukova M.A., Tsvetkova E.V., et al. V(D)J excision rings of B- and T-cell recombination as indicators of immunological reconstitution in children with acute lymphoblastic leukemia. Issues of Hematology/Oncology and Immunopathology in Pediatrics. 2016; 15(4): 42-50.-DOI: https://doi.org/10.24287/1726-1708-2016-15-4-42-50. (In Rus)].

Sultanbaev A.V., Musin S., Menshikov K., et al. 99P Quantitative indicators of TREC and KREC excision rings in malignant neoplasms. ESMO Open. 2023; 8(1): 100957.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.esmoop.2023.100957.

Hoolehan W., Harris J.C., Byrum J.N., et al. An updated definition of V(D)J recombination signal sequences revealed by high-throughput recombination assays. Nucleic Acids Res. 2022.-DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gkac1038.

Корсунский И.А., Кудлай Д.А., Продеус А.П., et al. Неонатальный скрининг на первичные иммунодефицитные состояния и Т-/В-клеточные лимфопении как основа формирования групп риска детей с врожденными патологиями. Педиатрия им. Г.Н. Сперанского. 2020; 99(2): 8-15.-DOI: https://doi.org/10.24110/0031-403X-2020-99-2-8-15I.A. [Korsunsky I.A., Kudlay D.A., Prodeus A.P., et al. Neonatal screening for primary immunodeficiency conditions and T-/B-cell lymphopenia as the basis for the formation of risk groups for children with congenital pathologies. Pediatrics Journal named after G.N. Speransky. 2020; 99(2): 8-15.-DOI: https://doi.org/10.24110/0031-403X-2020-99-2-8-15I.A. (In Rus)].

Козлов В.А., Тихонова Е.П., Савченко А.А., et al. Клиническая иммунология. Практическое пособие для инфекционистов. Красноярск: Поликор. 2021; 563.-DOI: https://doi.org/10.17513/np.518. [Kozlov V.A., Tikhonova E.P., Savchenko A.A., et al. Clinical immunology. A practical guide for infectious disease specialists. Krasnoyarsk: Polikor. 2021; 563.-DOI: https://doi.org/10.17513/np.518. (In Rus)].

Ru H., Zhang P., Wu H. Structural gymnastics of RAG-mediated DNA cleavage in V(D)J recombination. Curr Opin Struct Biol. 2018; 53: 178-86.-DOI: https://doi.org/10.1016/j.sbi.2018.11.001.

Wu G.S., Bassing C.H. Inefficient V(D)J recombination underlies monogenic T cell receptor β expression. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2020; 117(31): 18172-4.-DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.2010077117.

Garon E.B., Rizvi N.A., Hui R., et al. Pembrolizumab for the Treatment of Non–Small-Cell Lung Cancer. N Engl J Med. 2015; 372(21): 2018-28.-DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMoa1501824.

Daud A.I., Wolchok J.D., Robert C., et al. Programmed death-ligand 1 expression and response to the anti–programmed death 1 antibody pembrolizumab in melanoma. J Clin Oncol. 2016; 34(34): 4102-9.-DOI: https://doi.org/10.1200/JCO.2016.67.2477.

Creative Commons License

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

© АННМО «Вопросы онкологии», Copyright (c) 2024