Прогностическое значение определения активности и уровня иммунных субъединиц протеасом при раке эндометрия
##article.numberofdownloads## 77
##article.numberofviews## 104
pdf (Русский)

关键词

рак эндометрия
прогноз безрецидивной и общей выживаемости
химотрипсинподобная активность протеасом
субъединицы LMP2 и LMP7 протеасом

How to Cite

Кондакова, И., Середа, Е., Какурина, Г., Сиденко , Е., Коршунов , Д., Чернышова , А., & Коломиец , Л. (2023). Прогностическое значение определения активности и уровня иммунных субъединиц протеасом при раке эндометрия. VOPROSY ONKOLOGII, 69(3), 444–451. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2023-69-3-444-451

摘要

Введение. Рак эндометрия (РЭ) является одной из ведущей онкогинекологической патологией в России. В развитии рака эндометрия важную роль играют протеасомы – мультисубъединичные протеолитические комплексы.

Цель исследования. Оценка прогностической значимости активности протеасом и уровня иммунных субъединиц протеасом LMP2 и LMP7 в отношении  общей и безрецидивной выживаемости при раке эндометрия. 

Материалы и методы. В исследование было включено 90 больных раком эндометрия I-III стадии.  Химотрипсинподобную активность (ХТА) протеасом определяли в опухолевой и неизмененной тканях эндометрия по гидролизу флуорогенного олигопептида Suc-LLVY-AMС (Sigma). Содержание иммунных субъединиц протеасом LMP2 и LMP7 определяли методом Вестерн блоттинг.

Результаты. Выявлено увеличение химотрипсинподобной активности протеасом в опухолевой ткани по сравнению с неизмененным эндометрием, а также в опухолях III стадии по сравнению с I и II стадией. В ткани РЭ  наблюдалось увеличение содержания LMP2 и LMP7 субъединиц по отношению к неизмененной ткани. Однофакторный анализ показателей протеасом показал, что с 3-летней безрецидивной выживаемостью больных раком эндометрия связана химотрипсинподобная активность протеасом, а с общей выживаемостью  - содержание субъединицы  LMP2 протеасом.

Заключение. ХТА протеасом и содержание субъединицы LMP2 в опухолевой ткани можно рассматривать в качестве дополнительных критериев прогноза риска рецидивирования и общей выживаемости, что в свою очередь позволит планировать адекватный объем лечения больных.

 

https://doi.org/10.37469/0507-3758-2023-69-3-444-451
##article.numberofdownloads## 77
##article.numberofviews## 104
pdf (Русский)

参考

Злокачественные новообразования в России в 2020 году (заболеваемость и смертность). Под ред. Каприна А.Д, Старинского В.В., Шахзадовой А.О. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена − филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. 2021:252 [Malignant neoplasms in Russia in 2020 (morbidity and mortality). ed. by Kaprin AD, Starinsky VV, Shakhzadova AO. M.:P.A. Herzen Moscow state Medical Research Institute - Branch of the Federal state Budgetary Institution NMIC of Radiology of the Ministry of Health of Russia. 2021:252 (In Russ.)].

Коваленко Н.В., Вереникина Е.В., Максимов А.Ю., и др. Прогноз ранних рецидивов рака тела матки на основе мониторинга сывороточных биологических маркеров. Клиническая лабораторная диагностика. 2022;67(4):197203 [Kovalenko NV, Verenikina EV, Maksimov AYu, et al. Prediction of early relapses of uterine body cancer based on monitoring of serum biological markers. Clinical laboratory diagnostics. 2022;67(4):197203 (In Russ.)].

Vermij L, Smit V, Nout R, Bosse T. Incorporation of molecular characteristics into endometrial cancer management. Histopathology. 2020;76(1):5263. doi:10.1111/his.14015.

Winterhoff B, Thomaier L, Mullany S, et al. Molecular characterization of endometrial cancer and therapeutic implications. Curr Opin Obstet Gynecol. 2020;32(1):7683. doi:10.1097/GCO.0000000000000602.

Iunusova NV, Spirina LV, Kondakova LA, et al. Relationship between the expression levels of PAPP-A metalloproteinase and growth and transcriptional factors in endometrial cancer. Izv Akad Nauk Ser Biol. 2013;(3):28491.

Спирина Л.В., Кондакова И.В., Усынин Е.А., и др. Активность протеасом и содержание ростовых факторов при раке почки, мочевого пузыря и эндометрия. Российский онкологический журнал. 2010;(1):235 [Spirina LV, Kondakova IV, Usynin EA, et al. Proteasome activity and content of growth factors in kidney, bladder and endometrial cancer. Russian journal of oncology. 2010;(1):235 (In Russ.)].

Спирина Л.В., Кондакова И.В., Коломиец Л.А., и др. Активность протеасом и их субъединичный состав при гиперпластических процессах и раке эндометрия. Опухоли женской репродуктивной системы. 2011;(4):648 [Spirina LV, Kondakova IV, Kolomiets LA, et al. Activity of proteasomes and their subunit composition in hyperplastic processes and endometrial cancer. Tumors of the female reproductive system. 2011;(4):648 (In Russ.)].

Sahu I, Glickman MH. Structural insights into substrate recognition and processing by the 20s proteasome. Biomolecules. 2021;11(2):148. doi:10.3390/biom11020148.

Ebstein F, Kloetzel PM, Krüger E, et al. Emerging roles of immunoproteasomes beyond MHC class I antigen processing. Cell Mol Life Sci. 2012;69(15):254358. doi:10.1007/s00018-012-0938-0.

Basler M, Groettrup M. On the Role of the Immunoproteasome in Protein Homeostasis. Cells. 2021;10(11):3216. doi:10.3390/cells10113216.

Tertipis N, Haeggblom L, Grün N, et al. Reduced expression of the antigen processing machinery components TAP2, LMP2, and LMP7 in tonsillar and base of tongue cancer and implications for clinical outcome. Transl Oncol. 2015;8(1):10–7. doi:10.1016/j.tranon.2014.11.002.

Ben-Shahar S, Komlosh A, Nadav E, et al. 26 S proteasome-mediated production of an authentic major histocompatibility class I-restricted epitope from an intact protein substrate. J Biol Chem. 1999;274(31):2196372. doi:10.1074/jbc.274.31.21963.

Abbas R, Larisch S. Killing by degradation: regulation of apoptosis by the ubiquitin-proteasome-system. Cells. 2021;10(12):3465. doi:10.3390/cells10123465.

Jiang TX, Ma S, Han X, et al. Proteasome activator PA200 maintains stability of histone marks during transcription and aging. Theranostics. 2021;11(3):14581472. doi:10.7150/thno.48744.

Yen TT, Wang TL, Fader AN, et al. Molecular Classification and Emerging Targeted Therapy in Endometrial Cancer. Int J Gynecol Pathol. 2020;39(1):2635. doi:10.1097/PGP.0000000000000585.

Spirina LV, Bochkareva NV, Kondakova IV, et al. Regulation of insulin-like growth NF-κB proteasome system in endometrial cancer. Mol Biol. 2012;46(3):40713.

Ding F, Xiao H, Wang M, et al. The role of the ubiquitin-proteasome pathway in cancer development and treatment. Front Biosci (Landmark Ed). 2014;19(6):88695. doi:10.2741/4254.

Delle Donne R, Iannucci R, Rinaldi L, et al. Targeted inhibition of ubiquitin signaling reverses metabolic reprogramming and suppresses glioblastoma growth. Commun Biol. 2022;5(1):780. doi:10.1038/s42003-022-03639-8.

Wehenkel M, Ban JO, Ho YK, et al. A selective inhibitor of the immunoproteasome subunit LMP2 induces apoptosis in PC-3 cells and suppresses tumour growth in nude mice. Br J Cancer. 2012;107(1):5362. doi:10.1038/bjc.2012.243.

Liu Q, Wang HY, He XJ. Induction of immunoproteasomes in porcine kidney (PK)-15 cells by interferon-γ and tumor necrosis factor-α. J Vet Med Sci. 2019;81(12):177682. doi:10.1292/jvms.19-0157.

Creative Commons License

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

© АННМО «Вопросы онкологии», Copyright (c) 2023